专家点评Nature突破 | 邓宏魁团队利用化学小分子诱导人成体细胞转变为多潜能干细胞

多潜能干细胞具有无限增殖的特性和分化成生物体所有功能细胞类型的能力，这些神奇的特质，使其在细胞治疗、药物筛选和疾病模型等领域具有广泛的应用价值，是再生医学领域最为关键的“种子细胞”。在哺乳动物自然发育过程中，多潜能干细胞只短暂存在于胚胎发育的早期阶段，随后便会分化为构成生物体的各种类型的成体细胞，丧失其“种子细胞”的特性。如何逆转这一自然发育过程，使高度分化的成体细胞重新获得类似胚胎发育早期的多潜能状态，一直是干细胞与再生医学领域最重要的科学问题之一。

上世纪60年代，英国科学家John Gurdon在爪蟾中开发了细胞核移植技术，1997年Ian Wilmut团队利用该技术制备了克隆羊多莉，证明了哺乳动物高度分化的体细胞可以被逆转为早期胚胎的初始状态，并获得了发育为整个动物个体的能力。2006年，日本科学家Shinya Yamanaka报道了使用转基因的方式可以将小鼠成体细胞重编程为多潜能干细胞，被称为诱导多潜能干细胞（induced pluripotent stem cell，iPS细胞）。细胞核移植和导入外源基因的方法，证明了哺乳动物体细胞可以通过重编程逆转为胚胎发育早期状态，重新获得“多潜能性”。这两项技术于2012年荣获诺贝尔生理学或医学奖。iPS技术的建立，打破了传统胚胎干细胞的伦理限制，为构建病人自体特异性干细胞系提供了全新的方法，大大加速了干细胞临床应用的进程。近年来，已开展了针对帕金森、糖尿病和癌症等多种重点疾病的细胞治疗临床试验。目前细胞治疗的技术体系都是国外发展起来的，中国能否拥有原创的底层技术？

长期以来，邓宏魁团队一直致力于开发调控细胞命运的新方法和建立制备干细胞的底层技术。2013年，邓宏魁团队在Science杂志发表了一项原创性的研究成果，即不依赖细胞内源物质，仅使用外源性化学小分子就可以逆转细胞命运，将 体 细 胞 重 编 程 为 多 潜 能 干 细 胞（chemically induced pluripotent stem cells, CiPS细胞）。相比传统方法，化学小分子操作简便灵活，时空调控性强、作用可逆，可以对细胞重编程过程进行精确操控。另外小分子诱导体细胞重编程技术作为非整合方法，规避了传统转基因操作引发的安全问题，有望成为更安全的临床治疗手段。之后，邓宏魁团队又相继在Cell和Cell Stem Cell等杂志发表文章，详细阐明了化学重编程独特的分子机理，并进一步对小鼠化学重编程体系进行了大幅优化。随后，包括谢欣、姚红杰、裴端卿、刘林、祝赛勇等多个研究组利用相同或类似的小分子化合物组合，重复和优化了化学重编程技术。化学重编程诱导多潜能干细胞的研究开辟了一条全新的体细胞重编程途径，不仅有助于更好地理解细胞命运决定和转变机制，而且为未来再生医学治疗重大疾病带来新的可能。

2022年4月13日，北京大学邓宏魁研究团队在Nature上发表了题为 Chemical reprogramming of human somatic cells to pluripotent stem cells 的研究论文，首次在国际上报道了使用化学小分子诱导人成体细胞转变为多潜能干细胞这一突破性研究成果。运用化学小分子重编程细胞命运（化学重编程），是继“细胞核移植”和“转录因子表达”之后的新一代的，由我国自主研发的人多潜能干细胞制备技术，为我国干细胞和再生医学的发展解决了底层技术上的“瓶颈”问题。

本次研究中，邓宏魁团队首次报道了使用化学重编程的方法，成功实现了使用化学小分子将人成体细胞诱导为多潜能干细胞 (人CiPS细胞)。这一技术的建立开辟了人多潜能干细胞制备的全新途径，使其向临床应用，迈进了一大步。

图1：新一代诱导多潜能干细胞技术

作为高等动物，人类成体细胞特性和稳态调控的复杂性远非小鼠成体细胞可比，在表观遗传层面上存在重重障碍，严重限制了在人类成体细胞中激发细胞可塑性的可能。自2013年以来，尽管众多国际团队在小鼠化学重编程工作的启发下进行大量尝试，却一直未能解决人类成体细胞的化学重编程问题。这使得领域内普遍认为：人类成体细胞的表观遗传限制是极其严格的，很可能无法通过化学重编程激发人类成体细胞获得多潜能性。邓宏魁团队经过长期地坚持和不懈努力，突破了这一瓶颈。这一突破的关键步骤受低等动物再生过程启发。蝾螈等低等动物在受到外界损伤后其体细胞会自发的改变本身的特性，进而通过去分化获得一定的可塑性，借助这一可塑的中间状态从而实现肢体的再生。沿着这一思路，研究团队进行了大量化学小分子的筛选和组合，最终发现高度分化的人成体细胞在特定的化学小分子组合的作用下，同样可以发生类似去分化的现象，获得具有一定可塑性的中间状态。在此基础上，研究团队最终实现了人CiPS细胞的成功诱导。

与传统的技术体系相比，CiPS细胞诱导技术具有更加安全和简单、易于标准化、易于调控等不可替代的优势，突破了iPS技术面临的限制，具有广阔的临床应用前景。1）安全性方面，之前在小鼠CiPS细胞中已经证明，其携带的遗传突变显著少于传统 iPS 细胞，产生的嵌合体小鼠在长达 6个月的观察期内不产生肿瘤且全部健康存活。同时，人CiPS细胞分化来源的胰岛细胞移植入小鼠和非人灵长类动物模型体内，经过长期观察未发现肿瘤形成；2）在个体化制备方面，研究团队目前已在不同年龄个体来源的体细胞类型上都可实现稳定诱导人CiPS细胞；3）在细胞标准化制备方面，化学小分子具有操作简单，时空调控性强，作用可逆，合成储存方便，易于标准化生产等一系列特点，使得人CiPS细胞在标准化和规模化生产方面有着不可替代的优势。要特别指出的是，近期邓宏魁团队在Nature Medicine杂志报道了人CiPS细胞来源的胰岛细胞治疗糖尿病的安全性及有效性的相关研究（Nat Med | 邓宏魁/彭小忠/沈中阳合作揭示人多能干细胞分化的胰岛细胞可缓解非人灵长类的糖尿病）。移植后的糖尿病小鼠及猴模型均可以有效改善其血糖控制。这一结果凸显了人CiPS细胞作为“种子细胞”治疗重大疾病在安全性和有效性上的巨大优势。

在此基础上，研究团队还描绘了化学重编程诱导人CiPS细胞的分子路径，揭示了化学重编程与传统转录因子重编程不同的分子机制和独特的调控机理。研究发现人CiPS的诱导以分阶段精确调控的方式发生，在早期阶段产生了特殊的中间状态。通过和低等动物再生去分化过程中细胞性质的详细比较，研究团队确认了人CiPS诱导的早期阶段激活了与低等动物断肢再生早期类似的基因表达特征。更重要的是，研究团队还发现了调控这一类再生状态的关键信号通路，证明抑制过度的炎症反应，对于化学重编程诱导人体细胞重新获得类再生中间态至关重要。这一再生中间态为研究人体细胞重新激活再生基因提供了全新的思路，并且提示将来有仅通过化学小分子组合重新激活人体细胞可塑性和再生潜能的可能性，有望推动化学重编程在组织器官再生方向的应用，为再生医学研究提供新的可能途径。

近年来，邓宏魁团队已经将化学重编程的策略拓展到了调控细胞命运的不同方面应用上。该团队利用化学小分子实现了不同体细胞类型间的转变，直接将皮肤细胞重编程为功能神经元（Cell Stem Cell, 2015；Cell Stem Cell, 2017）；建立了具有全能性功能特征的EPS细胞（Cell，2017）；解决了肝脏细胞功能体外难以长期维持的难题（专家点评Science | 小分子，大作为：邓宏魁/卢实春/袁正宏合作团队突破人肝细胞体外长期培养瓶颈）（Science, 2019），构建了具有再生能力的新型类器官模型（Cell Research | 邓宏魁/徐君/李程合作建立具备再生能力的新型类器官培养方法）（Cell Research, 2021），实现了体内原位化学重编程（Cell Discovery, 2021）。这一系列工作体现了化学小分子调控细胞命运的普适性。

综述所述，化学重编程技术体系的建立不仅在多潜能干细胞临床应用领域具有巨大的意义和价值，同时为细胞命运调控及再生生物学理论研究方面提供了全新的视角和平台。化学重编程可以精确调控细胞命运，有望成为高效制备各种功能细胞类型的通用技术，为治疗重大疾病开辟了新的途径。

北京大学邓宏魁教授领导了此项研究。邓宏魁教授，中国人民解放军总医院卢实春教授和北京大学王金琳博士是这一研究成果的共同通讯作者。北京大学关景洋、王冠、王金琳、张正元、傅瑶、成林、孟高帆、吕钰麟为该研究成果的主要作者。北京大学李程教授为该研究的生物信息分析提供了重要指导。

原文链接：

https://www.nature.com/articles/s41586-022-04593-5

邓宏魁教授实验室在多能干细胞、体细胞重编程、转分化以及干细胞定向分化等领域做出了系列重要工作，特别是在2013年他带领的研究团队通过小分子化合物筛选建立了可以完全替代传统的转录因子从而将小鼠体细胞诱导成为多能干细胞的化学诱导重编程的方法，并在随后的多项工作中进一步优化了化学重编程的小分子组合，并发现了化学诱导重编程过程中经历一个类似于早期胚胎发育中XEN细胞的过程。化学重编程相比传统的转录因子重编程具有很多优点，例如操作方便，不需要包装病毒转染细胞，可能对细胞基因组的完整性更有利。但是近10年来，人体细胞化学重编程一直没有实现。

在刚刚发表的Nature文章中，邓宏魁教授实验室利用相似的化合物筛选方法，证明人的体细胞（包括胚胎来源和成体来源）也可以通过化学重编程的方法重编程为类似于胚胎干细胞样的多潜能干细胞，在这项工作中，研究人员通过多年的尝试，最终发现人的体细胞可以经十余种小分子化合物的组合诱导经历近2个月时间（中间分为4个诱导阶段）诱导成为人化学诱导多潜能干细胞，特别值得注意的是，研究人员通过单细胞RNA测序以及染色质可及性分析，发现第二个诱导阶段对于最终人体细胞诱导成功至关重要，经过小分子化合物诱导细胞可以到达一个中间状态，细胞具有了很好的命运可塑性，其中JNK细胞通路的抑制对于细胞获得可塑性非常重要，这一发现与之前裴端卿教授发现的小鼠体细胞重编程中c-JUN的重要作用非常类似。研究人员也发现在接下来的第三个诱导阶段，人体细胞重编程也会经历一个类似于小鼠体细胞化学重编程的XEN细胞阶段，最终实现重要多能性转录因子的激活和多能性状态的维持。

这项工作对于人体细胞重编程意义重大，为我们提供了一种不同于转录因子诱导重编程的方法，可能在未来干细胞临床应用中更为有利。当然，现在诱导过程还比较复杂漫长，在将来的工作中进一步优化小分子化合物组合和缩短诱导时间将是研究重点。